今天Emma女士來和大家一起聊一聊轉染，什么是轉染呢？

PART 01 認識轉染

轉染——是指將外源基因如DNA、RNA等導入真核細胞的技術。隨著分子生物學和細胞生物學研究的不斷發展，轉染已經成為研究和控制真核細胞基因功能的常規工具。在研究基因功能、調控基因表達、突變分析和蛋白質生產等生物學實驗中，其應用越來越廣泛。

PART 02 常見的細胞轉染技術

細胞轉染技術主要分為三大類：物理介導法、化學介導法及生物介導法：

物理介導法

一般是電穿孔法，適用于極難轉染的細胞，如原代細胞，轉染效率高，但轉染后細胞死亡率也很高。

化學介導法

選用轉染試劑與核酸結合，通過內吞作用進入細胞。一般轉染試劑有以下三種：

• 磷酸鈣：成本低，但轉染效率低，重復性差；

• 陽離子脂質體：轉染效率較高，但脂質體可能改變細胞的結構，對細胞毒性較大；

• 非脂質體試劑：以脂類為主的多組分試劑，轉染效率高，對細胞毒性低，且可生物降解。

• 
  

生物介導法

病毒載體，轉染效率高，但整合到基因組的風險大，基因長度也受限，比較適合構建穩轉的細胞株。

所以，綜合考慮到高轉染效率和低細胞毒性的結合，請看下圖：

X-tremeGENE™360轉染試劑在轉染效率和低細胞毒性方面都勝出了ThermoFisher的Lipofectamine。

相信X-tremeGENE™系列也是大家熟悉的經典轉染試劑，今天Emma女士再來給大家好好聊聊它。

X-tremeGENE™是Roche公司的注冊商標，我司東銳科技今年三月份也榮升為Roche的一級代理商。

X-tremeGENE™系列是非脂質體轉染試劑，此系列轉染試劑可以在含血清培養液中進行轉染實驗，不論是用DNA還是RNA轉染，也不論是轉染普通細胞系或者難轉染的細胞系，都可以很輕松的找到適合的那一款。

請看更詳細的細胞類型對應表：

用GFP編碼的pcDNA3.1質粒或者熒光素酶編碼的pCI質粒轉染細胞的實驗，驗證了以下細胞類型對應的轉染試劑：

?：可以使用；??：推薦使用；???：最佳推薦使用

話不多說，上Protocol干貨！

轉染Protocol以轉染12孔板中單孔細胞的量為例

01 平衡試劑

X-tremeGENE轉染試劑、DNA和稀釋液平衡至15~25°C，輕輕Vortex轉染試劑；

02 稀釋DNA

用稀釋液稀釋DNA，稀釋液可以選擇無血清或者減血清培養基，稀釋后的濃度為1ug質粒DNA/100ul稀釋液（0.01ug/ul），輕輕混勻；

03 分裝稀釋后的DNA

分別吸取4管100ul（含1ugDNA）稀釋液至四支無菌管中，管上分別標記1:1、2:1、 3:1、和4:1。建議使用無菌離心管或者組織培養處理過的圓底96孔培養板；

重要貼士：zui低稀釋液的量是100ul，如果低于100ul會顯著降低轉染效率；

04  混勻轉染試劑和DNA

分別吸取1、2、3、4ul轉染試劑至剛加入100ul稀釋液（含1ugDNA）的四支無菌管中，對應的標記為1:1,2:1, 3:1, and 4:1，注意轉染試劑不要碰觸到塑料管壁，再輕輕混勻；

重要貼士：避免影響轉染效率，未經稀釋的轉染試劑請不要碰觸到塑料管壁，并不要使用硅化處理的吸頭或者吸管。

05 形成轉染試劑/DNA復合物

將轉染試劑和DNA混合物在15~25°C環境中孵育15分鐘，形成轉染試劑/DNA復合物。

重要貼士：對于某些特殊的細胞系或者低比例的情況可能需要更長的孵育時間，如達到30分鐘。

06 轉染細胞

從培養箱中取出培養容器，培養基可以不進行更換。以一滴滴加入的方式向細胞中加入轉染試劑/DNA的復合物。

重要貼士：對于不同的培養容器，加入復合物的量不同，以12孔板單孔的量為例，每孔中（含1ml細胞培養基）加入100ul轉染試劑/DNA復合物（含1ugDNA）；

加入復合物后輕輕混勻培養皿或者培養瓶以保證復合物的均勻分布，如果條件允許，可以使用搖床低速混勻30秒。

一旦在細胞中加入了復合物，就無需再像其它轉染試劑一樣需要更換新鮮的培養基。

07 檢測目的蛋白含量

轉染細胞后將細胞繼續孵育18-72小時。孵育的時間受許多因素的影響，如DNA載體、細胞類型、細胞密度、細胞培養基和表達蛋白的類型。

孵育之后便可以選擇合適的方式進行蛋白的檢測，如熒光定量或者免疫印跡等。

雖然我們有無比可靠的轉染試劑，但是有時候為什么還是會出現實驗結果不佳的情況呢？

別灰心，這時候我們需要放大雙眼，來看一下Emma女士列出的要點，逐一排除原因，很快就可以做出理想的實驗結果，絕對會給您未來發表的文章增色哦！

PART 03  轉染試劑的技術答疑

Q：為什么轉染效率不高？

未優化最佳的轉染試劑與質粒的比例

影響細胞轉染效率的因素較多，主要包括細胞生長狀況、傳代次數、轉染試劑與質粒的比例和孵育時間、質粒大小等，其中轉染試劑與質粒的比例尤為關鍵。

對于不同的細胞類型，轉染試劑與質粒的最佳比例也不同。由于不同細胞表面結構、細胞膜、核膜等結構存在較大差異，同種轉染試劑在不同細胞的轉染效率也不盡相同。

因此，對于較難轉染的細胞如原代細胞、神經細胞，為提高轉染效率，必須對轉染試劑與質粒的比例做進一步優化。

對于X-tremeGENE™系列的轉染試劑，我們建議轉染試劑與質粒的比例按照1:1、2:1、3:1、4:1（ul：ugDNA）四個比例進行測試，選出適合的比例，對于大多數細胞類型，3:1的比例是最合適的。

 細胞的數量不夠

對于大多數細胞類型來說，建議在細胞密度70%-90%之間進行轉染，過多或者過少都可能降低轉染效率。

 未調整到最佳的孵育時間

轉染后最佳的孵育時間為18-72小時，對于大多數的細胞類型和質粒來說，最佳的孵育時間是24-48小時。

 轉染效率受培養基某些組分的抑制

培養基中一些組分如聚陰離子會影響轉染，保證培養基中無這樣的組分。

 轉染試劑/DNA復合物的量過少

稀釋后DNA的量zui低為100ul，過低的量會顯著降低轉染效率。

Q：為什么轉染后細胞死亡率太高？

細胞密度不適合

對于大多數細胞類型來說，建議在細胞密度70%-90%之間進行轉染，過多或者過少都可能降低轉染效率。

 細胞在無血清培養基中進行培養

對于常規細胞來說，無血清培養基的營養成分不夠，會降低細胞的存活率，雖然roche的轉染試劑可以在無血清培養基中進行轉染，但考慮到細胞需要血清營養成分的供給，應使用正常培養基或者減血清培養基。

 轉染劑/DNA復合物未和細胞混合均勻

應該將復合物以一滴滴緩慢加入的方式加入細胞培養基中，然后輕輕地前后和左右晃動，使復合物均勻分布。

 使用了內毒素污染的質粒載體

質粒應該保證是高純度無污染的，可以在提完質粒后或者提的最后一步，用75％乙醇沉淀，這樣可以起到除菌的效果。

 質粒基因產物對細胞有毒害作用

高表達的質?；虍a物可能會使得細胞本身生長緩慢或者存活率下降。

 使用了過多的轉染試劑/DNA復合物

陽離子轉染試劑濃度過高時，由于帶有很強的正電荷，對細胞有一定的毒性，導致細胞形態發生變化，細胞大量死亡，所以應降低復合物的濃度或者增加細胞的濃度。

PART 04   研究方向對應篇

快到文末了，如果您還沒選擇好您的轉染試劑，也可以按照下面的表格來選擇。

（點擊圖片查看清晰原圖）

如果有更多的問題，歡迎聯系我們。

— END —